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糖蛋白染色试剂盒是利用高碘酸希夫法进行糖蛋白染色的试剂盒。
过碘酸是一种强氧化剂，它能氧化糖蛋白及有关物质中的1，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与Schiff试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。
糖蛋白染色试剂盒大大增强了染色效果；性能稳定，特异性强；操作简捷，仅需1小时；过碘酸、苏木素配方经过优化，更适用于细胞、超薄组织切片染色。
按每个样用200μL染料计，试剂盒可以做100个样；

组份	100T-200T
试剂A：细胞固定液	20mL
试剂B：高碘酸氧化液	20mL
试剂C：Schiff染色液	20mL
试剂D：洗涤液	20mL
试剂E：苏木素染液	20mL

试剂AD室温避光保存；其他2～8℃避光保存。有效期1年。


纯水，孵育盒


● 由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸氧化时间，使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于过氧化，这是很关键的步骤。
● 过碘酸氧化温度18～22℃最佳。
● 染色后的糖蛋白为品红色条带，背景为浅粉色或者无色（不进行复染）。
● 颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸氧化液和Schiff染色液中作用时间的长短。
● 染色最好在孵育盒中置于暗处避光进行。
● 染色的条件因细胞种类而异，根据不同样本的实际染色结果做相应调整，在每次实验前，请先根据不同的实验要求、细胞类型、细胞的膜通透性等进行优化，确定最佳条件。以下方法仅供参考。


以下以制备好的细胞涂片/爬片为例，仅供参考，也可以根据相应步骤，调整试剂用量，直接进行原位染色。
1、制备好细胞涂片。
2、滴加固定液覆盖细胞样本，用固定液固定10～30分钟。
3、纯水冲洗2次，晾干。
4、滴加高碘酸氧化液覆盖细胞样本，室温氧化15～30分钟。
5、纯水冲洗4～5次。
6、滴加Schiff染色液覆盖细胞样本，放入孵育盒中盖好，室温置暗处避光染色20～60分钟。
注：
● 此步染好色后即可直接进行镜检观察，可以不做后续的核复染步骤。
7、滴加洗涤液洗涤2次，每次2分钟。（选做步骤）
8、流水冲洗2分钟。（选做步骤）
9、滴加苏木素复染液染色3～5分钟。（选做步骤）
10、水洗、晾干、镜检。（选做步骤）
染色结果：
糖蛋白：紫红色或红色
细胞质：浅红色
细胞核：蓝色（复染后）
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